懸浮細胞的電融合轉染技術
融合懸浮細胞的步驟與電穿孔的很類似，只是在進行高強度的電場脈沖前后，必須用低幅、高頻電場使細胞排成一條鏈。
1 用融合介質(zhì)（FM）洗懸浮細胞兩次，然后懸于FM中。洗滌細胞時，在臺式離心機上1000rpm下離心3分鐘，得到細胞沉淀，棄去上清液將細胞懸于新鮮FM介質(zhì)中。
2 將懸浮細胞轉移到相應的融合室內(nèi)。假如要使兩種不同的細胞彼此融合，轉移前要充分混合。
3 啟動介電電泳場，其振幅通常小于200V/cm，頻率在2MHz以內(nèi)，用顯微鏡檢測細胞是否排成一條鏈，調(diào)節(jié)振幅和頻率以達到最佳效果。
4 讓介電電泳場開約1分鐘后關掉，立即應用融合脈沖，其振幅數(shù)量級為1kV/cm。脈沖寬度小于1ms。在進行融合脈沖后立即再次啟動介電電泳場，常規(guī)讓其開啟約2分鐘。
5 關掉介電電泳場，讓細胞在樣品池中靜置10分鐘。
6 去掉FM，用普通培養(yǎng)基再次洗滌細胞。
7 將細胞轉移到培養(yǎng)皿，加入普通培養(yǎng)基，在培養(yǎng)箱一般條件下培養(yǎng)。

[注意事項]
1 適宜組分依使用的特定細胞種類而有變化。如果努力優(yōu)化電壓和脈沖寬度電穿孔結果仍不令人滿意，就應嘗試改變穿孔介質(zhì)。
2 影響電穿孔/電融合的另一重要因素與細胞狀態(tài)有關，為達到高效率，必須收集對數(shù)生長中期的細胞。
1.純化siRNA
在轉染前要確認siRNA的大小和純度。為得到高純度的siRNA，推薦用玻璃纖維結合，洗脫或通過15-20%丙烯酰胺膠除去反應中多余的核苷酸，小的寡核苷酸，蛋白和鹽離子。注意：化學合成的RNA通常需要跑膠電泳純化（即PAGE膠純化）。
2.避免RNA酶污染
微量的RNA酶將導致siRNA實驗失敗。由于實驗環(huán)境中RNA酶普遍存在，如皮膚，頭發(fā)，所有徒手接觸過的物品或暴露在空氣中的物品等，此保證實驗每個步驟不受RNA酶污染非常重要。
3.健康的細胞培養(yǎng)物和嚴格的操作確保轉染的重復性
通常，健康的細胞轉染效率較高。此外，較低的傳代數(shù)能確保每次實驗所用細胞的穩(wěn)定性。為了優(yōu)化實驗，推薦用50代以下的轉染細胞，否則細胞轉染效率會隨時間明顯下降。
4.避免使用抗生素
抗生素會在穿透的細胞中積累毒素。有些細胞和轉染試劑在siRNA轉染時需要無血清的條件。這種情況下，可同時用正常培養(yǎng)基和無血清培養(yǎng)基做對比實驗，以得到最佳轉染效果。
5.選擇合適的轉染試劑
針對siRNA制備方法以及靶細胞類型的不同，選擇好的轉染試劑和優(yōu)化的操作對siRNA實驗的成功至關重要。
 6.通過合適的陽性對照優(yōu)化轉染和檢測條件
對大多數(shù)細胞，看家基因是較好的陽性對照。將不同濃度的陽性對照的siRNA轉入靶細胞（同樣適合實驗靶siRNA），轉染48小時后統(tǒng)計對照蛋白或mRNA相對于未轉染細胞的降低水平。過多的siRNA將導致細胞毒性以至死亡。
7.通過標記siRNA來優(yōu)化實驗
熒光標記的siRNA能用來分析siRNA穩(wěn)定性和轉染效率。標記的siRNA還可用作siRNA胞內(nèi)定位及雙標記實驗（配合標記抗體）來追蹤轉染過程中導入了siRNA的細胞，將轉染與靶蛋白表達的下調(diào)結合起來。

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